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疫苗DNA殘留對人體的潛在危害 | ||||||||||||||||||||||||||||
對所使用的疫苗,我們zui關心的是疫苗的效果和其安全性?,F在很多疫苗是細胞培養疫苗,比如重組(CHO細胞)乙肝疫苗,Vero細胞狂犬病疫苗等大多數疫苗都是用細胞培養的方法生產,而對疫苗的純化是關鍵問題,我們要盡可能的去除宿主細胞DNA和宿主蛋白。假若宿主細胞的DNA和蛋白同疫苗一起注入人體將會產生不可預料的后果。就以疫苗DNA殘留為例,疫苗DNA殘留可能造成插入突變﹑導致抑癌基因失活﹑癌基因被激活等,zui終造成疫苗使用者致癌。
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疫苗DNA殘留的相關法規 | ||||||||||||||||||||||||||||
由于有如此潛在的危險性,所以許多機構對疫苗DNA殘留制定了相關標準,1986年世界衛生組織規定用細胞系生產的疫苗DNA殘留不能超過100 pg /支 ,而在1998年世界衛生組織認為細胞系生產的疫苗DNA殘留不能超過10 ng /支,而在1997年美國藥品食品衛生監督局規定在美國使用的細胞系疫苗DNA殘留不能超過10 pg /支,中國規定的細胞系疫苗DNA殘留不能超過100 pg /支。 所以在疫苗生產中要隨時對DNA殘留進行檢測,以便知道每個過程除掉DNA殘留的能力。在每一批產品中我們必須檢測DNA殘留,所以我們必須運用敏感且行之有效的對DNA殘留定量的檢測方法。通常規定每支疫苗DNA殘留不能超過100 pg,也就大約等同于17個甚至更少CHO細胞基因組DNA的含量,對如此微量的DNA殘留進行檢測,所用的技術方法就必須相當敏感和穩定,現在對DNA殘留定量的方法主要有以下三種:
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分子雜交技術檢測DNA殘留的原理和方法 | ||||||||||||||||||||||||||||
分子雜交分析的基本原理是基于DNA探針檢測變性而且固定在纖維素膜上的宿主細胞DNA。這些探針可以不依賴宿主細胞DNA來制備,例如用隨機引物制備探針。探針上標記酶﹑生物素﹑放射性同位素﹑地高辛(Dig)等。由于地高辛標記核酸探針,操作方便、靈敏度高,已標記的探針在4℃貯存可達兩年之久,方便隨時應用,所以現在常采用地高辛標記核酸探針,用光標記法將光敏Dig標記到探針上,制成光敏-Dig-核酸探針,再與固定在膜上的靶核酸進行靶DNA分子雜交,使之與抗Dig-堿性磷酸酶結合,zui后可用不同的檢測方式進行檢測,發光檢測和顯色檢測均可,靈敏度可達10pg以下(表 1 三種DNA殘留檢測方法的比較)。
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基于DNA結合蛋白的方法(Threshold® Immunoassay)檢測DNA殘留的原理和方法 | ||||||||||||||||||||||||||||
Threshold® Immunoassay分析系統是基于兩種DNA序列非特異性蛋白,單鏈DNA(ssDNA)結合蛋白(SSB)和抗ssDNA 的單抗。檢測的基本過程是當生物素—DNA單鏈結合蛋白和尿素酶—抗ssDNA 的單抗與變性的宿主細胞DNA結合zui終形成復合物,通過親合素將此復合物連接到生物素—纖維素膜,在通過洗滌所有非特異性的被洗脫掉,zui后放于有尿素溶液的讀數儀,尿素酶催化尿素分解成NH3和CO2 導致PH值發生變化,讀數儀根據PH值的變化換算成DNA的量,從而達到檢測DNA殘留含量的目的。
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實時定量PCR法檢測DNA殘留的原理和方法 | ||||||||||||||||||||||||||||
熒光定量PCR是基于PCR擴增時,在加入一對引物的同時加入一個特異性的熒光探針,產物的增加可以通過熒光信號指示,通過實時監控PCR體系中的熒光信號,對樣本中初始模板進行定量分析。定量PCR可實時檢測產物量,通過加入已知濃度的標準樣品繪制標準曲線,然后根據待測樣品在標準曲線中的位置推算初始模板的濃度,從而達到檢測DNA殘留含量的目的。
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三種檢測DNA殘留方法的比較 | ||||||||||||||||||||||||||||
3種方法用來檢測疫苗DNA殘留都要對樣品進行相應的處理,這對zui終的結果的準確性至關重要。而雜交相對對樣品DNA的損失小,而用Q-PCR需要提取樣品的DNA,損失較大。在我們選擇那種方法時我們要考慮它的穩定性,敏感性,成本等以至找到*的性價比的方法(表 1),從表1 我們不難發現使用分子雜交的方法是一種比較可行經濟實用的方法,目前國內也主要是用此方法。 表 1 三種DNA殘留檢測方法的比較
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